Wärmestimulationsmodul

#moorLAB-HEAT

Der Wärmestimulationsmonitor bietet flexible und reproduzierbare Stimulationsprotokolle zur Messung von Blutfluss- und Oxygenierungsantworten

Laser Doppler Imager is a standard accurate method we now use in our cerebral blood flow and brain perfusion in our laboratory.

Momoh A. Yakubu, PhD
Texas Southern University
We can't recommend Moor instruments highly enough. The technology is at the cutting edge and the support second to none.

Paul Sumners, PhD
London South Bank University
It goes without saying that the company's imaging technology itself is superb!

Gourav Banerjee
Leeds Beckett University
In a nutshell, moorFLPI-2 is the most user-friendly system for studying cerebral blood flow regulation in rodents.

Chia-Yi (Alex) Kuan, MD, PhD
Emory University School of Medicine
I expect to be using Moor Instrument’s technology for many years to come!

Faisel Khan, PhD
Ninewells Hospital & Medical School
Moor Instruments have consistently provided excellent help and support for my research.

Kim Gooding, PhD
University of Exeter Medical School
We have found Moor equipment to be extremely dependable and innovative.

Dean L. Kellogg, Jr., MD, Ph.D
University of Texas Health Science Center
I cannot rate the company or the staff highly enough.

Jim House, PhD
University of Portsmouth

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moorLAB-HEAT Skin Heat Controller: Precision Heating for Research Facilities

Enhance Vascular and Tissue Oxygenation Studies

The moorLAB-HEAT Skin Heat Controller delivers precise temperature control up to 45ºC, providing German research labs with advanced tools to optimise vascular and tissue oxygenation research.

Benefits include:

Independent dual-channel operation for simultaneous studies.
Accurate and reproducible temperature protocols.
Compatibility with Doppler blood flow monitors and tissue oxygenation monitors.
Seamless integration with moorLAB-PC software.

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Das folgende Zubehör für den moorLAB-HEAT können Sie ONLINE KAUFEN

LAD

Kleberinge

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LHAD

Adhesive Discs

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LHP-FP

Ein dickes Schaumstoffpolster für den Einsatz mit VHP3-Bildgebungssensoren

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LHP1A1

Needle probe adaptor

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LHP1H

Ersatzhalterung aus weißem Acetalkunststoff für VHP1-Wärmestimulationssensoren

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LIAD

Adhesive Discs

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Der nachfolgende Abschnitt ist eine Liste der häufigsten Fragen, die unsere Kunden uns zum moorVMS-HEAT-System stellen. Falls Sie eine Frage haben und Sie die Antwort darauf hier nicht finden, senden Sie uns bitte eine Email. Wir helfen Ihnen gerne weiter!

Q. Wofür wird der moorVMS-HEAT eingesetzt?
A. Der moorVMS-HEAT-Monitor kann benutzt werden, um die Hauttemperatur bei Blutflussmessungen genau einzustellen oder um reproduzierbare Änderungen der Hauttemperatur, die als Stimulus für Blutflussänderungen dienen, zu bewirken.

Q. Ist der moorVMS-HEAT ein eigenständiges Steuerungsgerät zur Hauterwärmung?
A. Ja, der moorVMS-HEAT kann entweder eigenständig (Stand-alone-Modus) betrieben oder über die moorVMS-PC-Software gesteuert werden. Dies ermöglicht eine bequeme Anbindung mehrerer Wärmestimulations- und Iontophoresemonitore sowie optimale Flexibilität hinsichtlich der Untersuchungsanordnung.

Q. Kann der moorVMS-HEAT softwaregesteuert werden?
A. Ja, der moorVMS-HEAT kann über die moorVMS-PC-Software gesteuert werden. Hier kann man individuelle Protokolle mit genauer Festlegung von Temperatur und Zeitdauer eingeben.

Q. Welche Temperaturbereiche umfasst der moorVMS-HEAT?
A. Der Messbereich des moorVMS-HEAT liegt zwischen 5 und 50°C und der Erwärmungsbereich zwischen 20 und 45°C (bzw. zwischen Umgebungstemperatur und 45°C, wenn die Umgebungstemperatur über 20°C liegt). Wichtig: achten Sie darauf, dass die gewählte Temperatur der jeweiligen Situation und dem Gewebe angepasst ist, um das Risiko lokaler Verbrennungen auszuschließen.

Q. Können die beiden Kanäle des moorVMS-HEAT auf verschiedene Temperaturen eingestellt werden – d.h. getrennt voneinander gesteuert werden?
A. Ja, die moorVMS-HEAT-Sensoren lassen sich innerhalb jeder einzelnen Zeitperiode auf verschiedene Temperaturen einstellen.

Q. Müssen alle beiden Sensoren an den moorVMS-HEAT-Monitor angeschlossen sein, damit er funktioniert?
A. Nein, der moorVMS-HEAT funktioniert auch, wenn nur ein Sensor angeschlossen ist.

Q. Muss ich die moorVMS-HEAT-Sensoren kalibrieren?
A. Anwender müssen die Wärmestimulationssensoren nicht kalibrieren und neue Sensoren werden schon kalibriert geliefert. Wir empfehlen, den jährlichen Werkskundendienst durchführen zu lassen, um sicherzustellen, dass das System ordnungsgemäß arbeitet.

Q. Muss ich den moorVMS-HEAT-Monitor einschicken, um die neuen Sensoren zu kalibrieren, wenn ich neue Sensoren für mein Gerät kaufe?
A. Nein, neue Sensoren werden von Moor Instruments kalibriert, wobei eine Rücksendung des moorVMS-HEAT-Monitors nicht erforderlich ist.

Q. Kann ich gleichzeitig eine Wärmestimulation und eine Iontophorese durchführen?
A. Ja, benutzen Sie hierfür die moorVMS-HEAT-Finger / Zehen-Wärmesensoren VHP2 in der ION1r-Iontophorese-Kammer. Der moorVMS-PC-Software ermöglicht eine simultane Steuerung von Wärmestimulations- und Iontophoresevorgängen.

Q. Welche optischen Sensoren benutze ich mit dem moorVMS-HEAT?
A. Bei Benutzung des moorVMS-LDF brauchen Sie einen VP12-Sensor. Für den DRT4 benötigen Sie einen DP12-V2-Sensor und bei Benutzung des moorLAB brauchen Sie einen MP12-V2.

Q. Welche Art Kleberinge muss ich zur Anwendung mit meinen moorVMS-HEAT-Sensoren bestellen?
A. VHP1: bestellen Sie bitte SHADs.
VHP2: bestellen Sie bitte PADs.
VHP3: bestellen Sie bitte IADs oder VHP-FP.

Q. Wird der moorVMS-HEAT-Monitor mit einer Garantie geliefert?
A. Ja, eine 3-Jahre-Garantie ist beim Kauf eines moorVMS-HEAT mit eingeschlossen (auf die Wärmestimulationssensoren gewähren wir eine Garantie von 6 Monaten).

There are numerous references where our skin heaters are cited. The list below is a small selection. Please contact us for reference lists on your chosen subject.

Brunt, V. E., Miner, J. A., Meendering, J. R., Kaplan, P. F., and Minson, C. T., (2012).
17-β estradiol and progesterone independently augment cutaneous thermal hyperemia but not reactive hyperemia.
Microcirculation. 2011 Jul; 18(5): 347–355.
Weblink

Brunt, V. E., Eymann, T. M., Francisco, M. A., Howard, M. J., and Minson, C. T., (2016).
Passive heat therapy improves cutaneous microvascular function in sedentary humans via improved nitric oxide-dependent dilation.
Journal of Applied Physiology Published 14 July 2016 Vol. no. , DOI: 10.1152/japplphysiol.00424.2016.
Weblink

Van Duijnhoven, N. T. L., Janssen, T. W. J., Green, D. J., Minson, C. T., Hopman, M. T. E., and Thijssen, D. H. J., (2009).
Effect of functional electrostimulation on impaired skin vasodilator responses to local heating in spinal cord injury.
Journal of applied physiology (Bethesda, Md.: 1985), 106(4), pp.1065–71.
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Dupont, J. J., Farquhar, W. B., Townsend, R. R., and Edwards, D. G., (2011).
Ascorbic acid or L-arginine improves cutaneous microvascular function in chronic kidney disease.
Journal of applied physiology (Bethesda, Md.: 1985), 111(6), pp.1561–7.
Weblink

Harvey, J. C., Roseguini, B. T., Goerger, B., Fallon, E. A., and Wong, B. J., (2016).
Acute thermotherapy prevents impairments in cutaneous microvascular function induced by a high fat meal.
Journal of Diabetes Research. Submission Accepted 5th July 2016.
Weblink

Heimhalt-El Hamriti, M., Schreiver, C., Noerenberg, A., Scheffler, J., Jacoby, U., Haffner, D., and Fischer, D.C., (2013).
Impaired skin microcirculation in paediatric patients with type 1 diabetes mellitus.
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Ketorolac alters blood flow during normothermia but not during hyperthermia in middle-aged human skin.
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Holowatz, L. a, and Kenney, W. L., (2011)a.
Acute localized administration of tetrahydrobiopterin and chronic systemic atorvastatin treatment restore cutaneous microvascular function in hypercholesterolaemic humans.
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Holowatz, L. a, and Kenney, W. L., (2009).
Chronic low-dose aspirin therapy attenuates reflex cutaneous vasodilation in middle-aged humans.
Journal of applied physiology (Bethesda, Md.: 1985), 106(2), pp.500–5.
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Holowatz, L. a, and Kenney, W. L., (2011)b.
Oral atorvastatin therapy increases nitric oxide-dependent cutaneous vasodilation in humans by decreasing ascorbate-sensitive oxidants.
American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology, 301(3), pp.R763–8.
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Holowatz, L. a, and Kenney, W. L., (2007).
Up-regulation of arginase activity contributes to attenuated reflex cutaneous vasodilatation in hypertensive humans.
The Journal of physiology, 581(Pt 2), pp.863–72.

Holowatz, L. a, Santhanam, L., Webb, A., Berkowitz, D. E., and Kenney, W. L., (2011).
Oral atorvastatin therapy restores cutaneous microvascular function by decreasing arginase activity in hypercholesterolaemic humans.
The Journal of physiology, 589(Pt 8), pp.2093–103.

Kuhlenhoelter, A. M., Kim, K., Neff, D., Nie, Y., Blaize, A. N., Wong, B. J., Kuang, S., Stout, J., Song, Q., Gavin, T. P., and Roseguini, B. T., (2016).
Heat therapy promotes the expression of angiogenic regulators in human skeletal muscle.
American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. DOI:10.1152/ajpregu.00134.2016.

Lang, J. a., Holowatz, L. a., and Kenney, W. L., (2009).
Local tetrahydrobiopterin administration augments cutaneous vasoconstriction in aged humans.
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Nabavi Nouri, M., Ahmed, A., Bril, V., Orszag, A., Ng, E., Nwe, P., and Perkins, B.a., (2012).
Diabetic neuropathy and axon reflex-mediated neurogenic vasodilatation in type 1 diabetes.
PloS one, 7(4), p.e34807.

Petrofsky, J., Alshammari, F., Khowailed, I. A., Rodrigues, S., Potnis, P., Akerkar, S., Shah, J., Chung, G., and Save, R., (2013).
The effect of acute administration of vitamin D on micro vascular endothelial function in Caucasians and South Asian Indians.
Medical science monitor: international medical journal of experimental and clinical research, 19, pp.641–7.

Wong, B., and Minson, C., (2011).
Altered thermal hyperaemia in human skin by prior desensitization of neurokinin-1 receptors.
Experimental physiology, 96(6), pp.599–609.

Moor Instruments are committed to product development. We reserve the right to change the specifications below without notice.

Analogue outputs

Range: 0 – 5 V
Number of outputs: 2
Connectors: BNC sockets

Electrical safety classification

Class I (protectively earthed)

Electromagnetic compatibility

The moorLAB-HEAT complies with the requirements of EN 61326-1:2021 Electromagnetic compatibility of electrical equipment for measurement, control and laboratory use. The moorLAB-HEAT is suitable for use in a basic electromagnetic environment such as a laboratory. It is suitable for use in all locations other than those allocated in residential environments and those directly connected to a low voltage power supply network which supplies buildings used for domestic purposes.

Intended use

The moorLAB-HEAT skin heater and temperature monitor is intended for the localised heating of skin. The moorLAB-HEAT is intended for use in research and educational life science applications only. The moorLAB-HEAT is not a medical device and is not intended for use with human subjects for any of the following specific medical purposes:

Diagnosis, prevention, monitoring, prediction, prognosis, treatment or alleviation of disease.
Diagnosis, monitoring, treatment, alleviation of, or compensation for, an injury or disability.
Investigation, replacement or modification of the anatomy or of a physiological or pathological process or state.

Measured parameters

Temperature
Range: 5 – 50ºC
Accuracy: ±0.5ºC Sampling rate (all parameters) 40Hz

Method of cleaning

Wiping with a cloth soaked in isopropanol or a mixture of isopropanol and water.

Method of sterilisation

Not suitable for sterilisation

Mode of operation

Continuous

Number of measurement channels

Operating environment

Indoor laboratory use Temperature range: 15 – 30ºC
Atmospheric pressure: 75 – 106 kPa
Humidity: 0 – 75%, non-condensing
Maximum altitude: 2000 m
Pollution degree: 2

Power source

AC mains, 100-230V ±10%, 50-60Hz, 30 VA

Storage and transportation environment

Temperature range: 5 – 45ºC
Atmospheric pressure: 75 – 106 kPa
Humidity: 0 – 75%, non-condensing

Temperature control

Range: 20°C (or ambient) to 47°C
Resolution: 0.1°C

Weight

Under 3kg

Moor Instruments manufacture a wide range of probes designed to help you assess flow from almost any tissue. We are more than happy to advise on your particular application but hope too that the following general notes are useful.

LHP1

Standardsensor für Wärmestimulation

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LHP2

Kleiner Wärmestimulationssensor für Finger und Zehen/kleine Hautflächen

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LHP3

Ein wassergefüllter, durchsichtiger Wärmestimulationssensor

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